TP, enzymologie.
TD : TP, enzymologie.. Recherche parmi 300 000+ dissertationsPar hezilislam • 3 Décembre 2016 • TD • 677 Mots (3 Pages) • 1 293 Vues
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Nom : Hezil date : 07 déc 2016
Prénom : Islam
Groupe : 07
Section : B
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Introduction :
Principe :
La détermination du pH optimum pour l’enzyme protéase se fait en étudiant la réaction d’hydrolyse de la caséine à différents pH. Pour se faire, on suivra l’activité enzymatique par spectrophotométrie dans différents pH.
Matériels et méthodes :
1-Matériels :
-Tube à essai
-Papier filtre Whatman
-Pipette de 1,2 et 5 ml
-Micropipette P1000
-Spatules
-Cuve en verre
-Spectrophotomètre
-Balance de précision
-Agitateur Vortex
-Bain-marie.
2-Réactifs :
-Solution de TCA (Tri-Chloro-Acétate) à 4%
-Solution de à 0.2% diluée dans NaOH 0.1N[pic 4]
-Réactif de Folin-Ciocalteau dilué à 50%
-Tampon phosphate/citrate 0.2M, pH 3,5,7,9,11
-Substrat : solution de caséine à 2.5% dans le citrate de Sodium 0.2M (ou Tampon phosphate 50mM pH 7.5 : dissoudre la caséine dans le tampon, chauffer doucement sous agitation à 80-85°C pendant environ 10 minutes jusqu’à ce qu’une dispersion homogène soit obtenue. Ne pas faire bouillir)
Méthodes :
La manipulation se fait en deux étapes :
Etape 1 : On prépare 4 tubes (la première série) contenants un mélange réactionnel, on met dans chaque tube :
0.5ml d’extrait enzymatique, 0.75 ml de tampon phosphate, puis dans le tube 1 on ajoute 1.25ml de caséine à 4%, dans le tube 2 on ajoute 1.25ml de caséine à 5%, dans le tube 3 on ajoute 1.25ml de caséine à 6% et dans le 4éme tube on ajoute 1.25ml de caséine à 7%, puis on les incube à 50°C pendant 30 minutes après agitation, ensuite on ajoute 1.25ml de TCA dans chaque tube, et on les laisse pour reposer pendant 10 minute à une température ambiante, enfin on les filtre.
On prépare encore 4 tubes mais cette fois contenant des blancs :
On mais dans chaque tube 0.5ml d’extrait enzymatique, 0.75 de tampon phosphate/citrate, 2.5ml de TCA, et pour le tube 1 on ajoute 1.25ml de caséine à 4%, pour le tube 2 on ajoute 1.25ml de caséine à 5%, pour le tube 3 on ajoute 1.25ml de caséine à 6%, et pour le tube 4 on ajoute 1.25ml de caséine à 7%, puis on les agite et laisse reposer pendant 10 minutes, enfin on les filtre.
Etape 2 :
On prépare 8 tubes dans chaque un on met 0.5 de filtrat à partir d’un des tubes précédents, 1.5ml de solution de , 0.25ml de réactif de Folin, puis on les agite et incube pendant 30 minutes à une température ambiante, finalement on fait une lecture de la DO à 750nm entre le blanc et l’essai pour chaque concentration de caséine tube.[pic 5]
Résultats et discussion :
Les résultats d’absorptions obtenues sont présentés dans le tableau ci-dessous :
Blanc | N° de tube | B1 | B2 | B3 | B4 | B5 |
Dosage a 750nm | 0.312 | 0.774 | 0.824 | 0.542 | 0.529 | |
Mélange réactionnel | N° de tube | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
Dosage a 750nm | 0.319 | 0.203 | 0.443 | 0.664 | 0.657 | |
Dosage corrigé (Do réactif- Do blanc) | 0.007 | -0.571 | -0.381 | 0.122 | 0.128 |
A cause des erreurs dans la manipulation on a commis des erreurs dans la mesure de pH = 7 et pH = 9 , où on remarque que les valeurs de Do des blancs est plus élevé que la valeur de Do des tubes réactionnels , ce qui va nous donner un résultat négative de dosage corrigé . En plus , on est sceptique sur les deux dernier valeurs où pH = 9 et pH = 11 où non seulement les deux valeurs sont très proche mais aussi la valeur de la Do corrigée correspondante à pH = 11 est plus grande que celle de pH = 9 ce qui est non intuitive.
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