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Compte rendu TP Génétique

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Par   •  14 Mai 2016  •  Dissertation  •  2 466 Mots (10 Pages)  •  1 925 Vues

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Compte-rendu TP

Variant DsRed T3

Introduction

Dans les années 60, une révolution biologique est apparue grâce à la découverte de la GFP (protéine fluorescente verte) qui a permis d’étudier les protéines et ainsi mieux les comprendre dans leur environnement naturel : la cellule.

La DsRed est une protéine ayant la propriété d’émettre une fluorescence de couleur rouge. Elle est issue d’un corail nommé Discosoma. Elle est intéressante car on peut fusionner le gène de cette protéine avec le gène d’une protéine que l’on souhaite étudier. La nouvelle protéine sera alors visible au microscope à fluorescence. L’un de ses défauts rédhibitoires est sa lenteur de maturation car l’une des formes intermédiaires possède une fluorescence verte similaire à celle de la protéine fluorescente verte (GFP).
On étudie dans ce TP un variant de cette protéine, la DsRed T3, qui possède des propriétés plus adaptées à l’étude du fonctionnement de la DsRed (exemple : temps de maturation plus rapide).

Il existe aujourd’hui différents variants de la DsRed qui ont été obtenus par génie génétique. Ces mutations ont permis d’obtenir des formes dimériques, monomériques qui permettent à la protéine de moins s’agréger donc d’être plus soluble mais fluoresce moins. Ces mutations ont permis aussi d’augmenter la brillance ou de changer la gamme de longueur d’ondes concernées par les spectres d’excitation et d’émission.

On va analyser la différence entre les transformants portant la DsRed T3 et la DsRed T3 mutée.

Objectif

Nous avons réalisé une mutation dirigée d’un plasmide qui contient le gène de la DsRed T3 pour lui incorporer des mutations.

Matériel méthode

Précautions d’usage :

Le port de la blouse est obligatoire.
On utilise 3 types de micropipettes : la P1000 qui peut prélever de 200 à 1000 μL ; la P200 qui peut prélever de 20 à 200 μL et la P20 qui peut prélever de 2 à 20 μL.
On fait bien attention de régler les volumes à l’aide des molettes. On pipette avec des embouts stériles et à hauteur des yeux. On appuie seulement au premier cran pour prélever le volume voulu.

On prendra soin de ne rien approcher d’inflammable des becs benzène.

1 - PCR chevauchante

ADN plasmidique PQE31-DsRed T3

2 μL

Mix dNTP

8 μL

Tampoon PCR 10X

10 μL

Amorce Forward 2

2 μL

Amorce Reverse 2

2 μL

Total

24μL

Eau milli Q autoclavée 50 uL x 2

76 μL car (100-24)

[pic 1]

[pic 2]

On prélève 50 μL grâce à une micropipette P200 (qui peut prélever de 20 à 200 μL) que l’on verse dans un autre tube.

[pic 3]

+ 1μL Pfu polymérase

T+

[pic 4]

T-

Bien vortexer
Placer les tubes dans le thermocycleur

Programme : 1 cycle [5’00; 95°C], 16 cycles [0’30: 95°C/1’00: 55°/4’30: 72°], 1 cycle[12’00:72°]

En parallèle on prépare les boîtes de pétri LB-agar qui nous serviront en fin de TP pour déposer les cultures bactériennes. Ainsi que le gel d’agarose pour l’électrophorèse qui servira à plusieurs groupes.

Vortex : appareil utilisé pour mélanger des solutions, notamment dans des micro-tubes

Thermocycleur : appareil effectuant la réaction de PCR

2 - Digestion par enzyme DpnI

T+

T-

[pic 5]

[pic 6]

[pic 7]

[pic 8]

T+ D+  

T+ D-      

On prélève 2 fois 15 μL de T+ que l’on transvase dans 2 tubes différents

(2 μL Tampon DpnI 10X)

1 μL de l’enzyme DpnI

2 μL d’eau milli Q autoclavée

3 μL d’eau milli Q autoclavée

     

             

[pic 9]

[pic 10]

 T- D+    

T- D-

On prélève 2 fois 15 μL de T- que l’on transvase dans 2 tubes différents

(2 μL Tampon DpnI 10X)

1 μL de l’enzyme DpnI

2 μL d’eau milli Q autoclavée

3 μL d’eau milli Q autoclavée

     

Incuber 1h à 37°C (Bain-marie)

[pic 11]

On prélève 2 fois 5 uL de chaque tube pour avoir 4 échantillons pour l’électrophorèse et 4 échantillons pour la transformation bactérienne

[pic 12]

[pic 13]

[pic 14]

[pic 15]

[pic 16]

[pic 17]

[pic 18]

[pic 19]

T+ D+  

T+ D-      

 T- D+    

T- D-

T+ D+  

T+ D-      

 T- D+    

T- D-

Ces tubes serviront à la transformation des bactéries

Ces tubes serviront à l’analyse dans le gel d’agarose après avoir ajouté quelques gouttes  de tampon de charge

...

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