L'olivier

1. INTRODUCTION

L’olivier a suscité un intérêt particulier ces dernières

années non seulement au niveau de la Méditerranée,

principale région oléicole à l’échelle mondiale, mais

aussi au niveau d’autres continents, notamment

américain. Ce regain d’intérêt est dû, en plus de

l’intérêt socio-économique et environnemental de

cette espèce, aux qualités sanitaires et nutritionnelles

particulières de l’huile d’olive. Le développement de

cette culture est tributaire de la mise au point de

techniques de production en masse de plants de

qualité, permettant la diffusion des clones sélectionnés

et des génotypes performants nouvellement obtenus.

Les progrès réalisés en matière de micropropagation

de l’olivier, bien que modestes comparativement

à d’autres espèces fruitières, sont prometteurs. Plusieurs

cultivars ont ainsi été multipliés in vitro (Leva et al.,

2004). Les travaux concernant la Picholine marocaine,

représentant près de 98 % des plantations oléicoles au

Maroc et destinée à la production d’olives de table et

de l’huile d’olive, restent cependant très limités

(Walali, Abousalim, 1993 ; Brhadda et al., 2003). Dans

cette dernière étude, nous avons identifié un milieu de

culture approprié pour le microbouturage de ce

cultivar. La synthèse des travaux réalisés chez d’autres

cultivars d’olivier montre que d’autres facteurs

influencent la morphogenèse des microboutures mises

en culture in vitro (Rugini, 1984 ; Rugini, Lavee,

1992 ; Bati et al., 1999).

Dans le présent travail, les effets de la concentration

de zéatine et du type et de la concentration

d’auxine ont été étudiés, respectivement, en phase de

prolifération et d’enracinement. Ont été comparés les

explants issus de matériel adulte et juvénile de la

Picholine marocaine.

2. MATÉRIEL ET MÉTHODES

2.1. Matériel végétal utilisé et méthodes de

désinfestation

Le matériel végétal utilisé provient de la Picholine

Marocaine, cultivar à double fin. Les types d’explants

comparés proviennent respectivement de plants issus

de germination in vitro et de plants obtenus par

bouturage semi-ligneux à partir de pieds-mères

sélectionnés et âgés de 30 ans. Les pousses de l’année

ont été prélevées sur les plants élevés jusqu’à l’âge de

quatre ans, en pots, sous serre.

La germination in vitro des embryons zygotiques,

préalablement prétraités à basse température, a lieu

dans un milieu MS modifié selon le protocole

précédemment décrit (Brhadda et al., 2000). Dans le

cas des plants adultes, les pieds-mères ont été

prétraités avec un fongicide plusieurs jours avant le

prélèvement des pousses. Ces dernières ont ensuite été

essuyées avec du coton imbibé de Tween 20 et lavées,

pendant quelques minutes, sous l’eau courante. Les

microboutures prélevées ont été trempées pendant

trois minutes dans une solution de chlorure de mercure

à 677 mg/l contenant quelques gouttes de Tween 20,

avant d’être rincées abondamment à l’eau distillée

stérile.

2.2. Milieux et conditions de culture

Les microboutures ayant survécu à l’établissement ont

été transférées dans

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